Drupal 500 내부 오류 - Geeks of Knowhere

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업데이트됨

1. ASR Pro 다운로드

2. 프로그램 실행

3. 컴퓨터에서 바이러스를 찾아 제거하려면 "지금 검색"을 클릭하십시오.

다음은 Drupal 500 내부 오류 문제를 해결하는 데 도움이 되는 간단한 방법입니다.비특이적 염색은 분자 데이터 형식의 단독 항체 또는 이차 항체 간의 이온 상호작용으로 인해 매우 많이 발생하며, 이로 인해 높은 배경 잡음이 발생할 수 있으며, 이로 인해 조직에서 신뢰할 수 있는 단백질의 발현 위치가 더 이상 표시될 수 없습니다. 추적됩니다.

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가능한 원인	솔루션
500 내부 오류는 어떻게 준비합니까? 1차 항체 및 2차 항체 항체 설정이 호환 가능	php에서 500 오류가 발생할 수 있다는 문제를 어떻게 해결할 수 있습니까? … 원래 항체에 대한 저항성이 높은 2차 항체를 소비하고 있는지 확인하지 마십시오(예: 1차 항체는 토끼에서 탁월할 수 있으므로 2차 항- 토끼항체). IHC 문제를 어떻게 해결합니까? 먼저 다음 옵션에서 면역조직화학적 색조의 문제를 찾으십시오.불충분한 필수 항체:1차 항체와 이 항체는 호환되지 않습니다.직물의 이점:세포는 불투과성:왁스 제거로는 충분하지 않을 수 있습니다. • 2차 동형과 함께 가장 중요한 동형이 호환되는지 확인하십시오. 1차 항체에서 생성된 2차 항체를 섭취하고 있는지 확인하십시오. 이러한 특정 유형의 기본 및 이차 동형이 호환될 수 있는지 확인하십시오. 충분합니다
실제 단백질에 결합된 항체가 없습니다	더 높은 농도의 최전방 항체를 추가하십시오 4°C에서 긴(예: 밤새) 항체와 샘플을 배양합니다.
항체. 이것은 누구라도 원래의 일반 주장에서 단백질을 찾을 수 있도록 하는 IHC 절차에 적합하다는 것을 잊지 마십시오.	항체에 대한 우리의 항체가 귀하가 사용하고 있는 광범위한 IHC가 표시되었습니다(예: 포르말린/PFA 결합, 딥 아이스 등). 원래(변성되지 않은) 웨스턴 블롯에서 시각적으로 항체를 테스트하여 손상되지 않았는지 확인합니다.
항체 또는 증폭 장치는 부적절한 보관 장소 및 취급으로 인해 활성을 상실했을 수 있습니다.	데이터 시트와 관련된 제품 보관 지침을 읽으십시오.	li> 과도한 삼키거나 해동하지 마십시오. 양성 대조군
관심 단백질은 일반적으로 현재 조직에 존재하지 않습니다.	긍정적인 영향. 외과 문헌을 참조하여 조직 유형을 착용했을 때만 단백질이 존재하는지 확인할 수 있습니다.
최근 관심을 받고 있는 단백질은 단순히 저주파수	쇼게인을 사용 신호를 증가시키기 위해, 예를 들어, 다른 항체에 접합된 비오틴. 형광단
(형광 검출을 사용할 때) 너무 직사광선에 의해 손상될 수 있습니다.	< li> 형광단이 결합된 추가 항체는 항상 어두운 곳에 보관하십시오. 너무 많은 빛은 장기적으로 광표백으로 이어질 수 있습니다.
탈랍이 없을 수 있음(파라핀에 직물을 내장한 경우)	각 섹션을 많이 탈랍 더 오래 신선한 자일렌을 사용하십시오.
고정과 관련된 방법(포르말린-파라포름알데히드 고정제 사용 시)은 에피토프 보호를 망칠 수 있습니다.	< li> 에피토프를 제거하는 항원 회수 방법의 혼합물을 사용하십시오(예: pH 6 또는 11에서 완충액을 사용한 열 매개, 효소 등). 적은 시간에 파티션을 복구합니다.
항체가 세포 핵에 들어갈 수 없습니다 (내 표적 단백질도 피셔 단백질인 경우)	차단 모니터 및 항체 희석 버퍼에 Triton X와 같은 구조에 강한 누출을 추가합니다. <> 침투 방법 주제에 대한 피드를 참조하십시오.
투과성은 세포 필터를 손상시킵니다(종종 표적 단백질이 단백질 막 층인 경우)	< ul> < li> 덜 폭력적인 세척제를 사용하십시오(예: Triton X 대신 Tween 5). 또는 면봉에서 투과 안정제를 제거하기만 하면 됩니다. 침투 방법에 대한 프로토콜을 참조하십시오.
탐폰이 박테리아로 오염되었을 수 있습니다. 나란히	0.01 추가 항체 보관을 위한 도움말 버퍼용 % 아지드. 새로운 멸균 면봉을 사용하십시오(예: 가장 멸균되고 깨끗한 PBS ).

업데이트됨

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drupal 500 internal error

먼저, 옵션 이하를 사용하여 놀라운 면역조직화학적 황변 현상의 문제를 확인하십시오.

식용 색소 없이 낮음

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더 높은 농도의 항체를 사용하십시오.

더 오래 배양

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현재 1차 항체 호스트에 대해 추가 항체를 구성해야 합니다. 1차 항체가 마우스 항-HSP70인 경우 2차 항-마우스 항체(예: 염소 항-마우스 항체)의 이점을 얻으려면

이소타입도 호환되어야 합니다.

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샘플은 황변하는 동안 액체로 덮어야 합니다.

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메탄올과 아세톤은 태양 전지판의 투과성을 높이고 고정합니다.

포름알데히드를 사용하여 세포 투과성을 높일 경우 0.2% Triton X-100을 사용하십시오.

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더 긴 탈랍 섹션

항상 가장 현대적인 자일렌을 사용하십시오.

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IHC 항체가 검증을 마쳤는지, 또는 포르말린, 파라핀 포매, 신선 냉동 등 어떤 유형인지 확인하십시오.

항체가 이미 정보 기술에 영향을 미치지 않았는지 확인하기 위해 우수한 Western blotting을 통해 항체를 테스트합니다.

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커밋과 같은 시간 내에서 기간을 줄입니다.

모든 종류의 항원 회수 기술을 사용하여 에피토프를 밝혀내십시오.

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대부분의 큰 항체는 샘플과 함께 배양 시간을 늘립니다.

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샘플은 시간이 지남에 따라 디스플레이 값이 저하되므로 처리 직후에 강력하게 설명해야 합니다. 필요한 경우 슬라이드를 4 ° C의 특정 어두운 곳에 보관하십시오.

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해동 주기당 동결은 유해하며 품질 저하로 이어질 수 있습니다. 가장 작은 것을 만드는 것이 가장 좋습니다.소유자가 제품을 받자마자 분취량에서 수량 없음.

항체가 최적으로 수집되지 않았습니다. 불행히도 이것은 초보자용 바이알과 함께 사용해야 할 수도 있습니다.

어버트먼트가 확실히 암실에 보관되지 않은 경우(면역형광만을 이용하는 경우), 새 바이알을 사용해야 합니다.

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양성 대조군 실시

이 가장 중요한 단백질이 존재하지만 일반적이지 않은 경우 증폭 단계를 사용하여 전체 신호를 최대화합니다.

높은 배경

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더 긴 탈랍 조각

항상 반 훈제 크실렌을 사용하십시오.

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HRP 검출 시스템을 실행할 때 염색 전략을 수행하기 전에 3% H ₂ O ₂로 내인성 퍼옥시다제도 수행

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비오틴 검출 시스템이 내인성 비오틴 농도가 높은 샘플(예: 치료제, 간 기관, 비장)에 있는 경우, 비오틴 세트 및 비오틴을 사용한 정기적 거부 단계와 함께 및 후에 아비딘 샘플을 배양할 때 비오틴 차단을 수행합니다. 따라서 제거 메인 항체 배양 없음

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1차 및/또는 대체 항체의 추가 희석.

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1차 항체를 생성하지 않고 2차 항체를 테스트합니다. 염색이 있는 경우 가장 중요한 2차 항체를 교체하거나 접합된 최상의 항체를 대신 고려하십시오.

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어려운 잠복기를 연장하거나 제한제를 변경하는 것을 고려하십시오.

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증폭을 위한 배양 시간을 줄이고 대부분의 이차 항체를 추가로 희석합니다.

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계단 사이를 충분히 씻을 수 있도록 하는 것이 매우 중요합니다. 세척 단계에 대한 프로토콜 지침 이후에 따를 가능성이 있는지 확인하십시오.

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초점면에 의한 살 얼룩이 불필요한 배경 얼룩을 제거하므로 더 얇은 천을 사용하는 것이 좋습니다.

비특이적 염색

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특정 농도와 배양 시간을 줄이도록 하십시오.

drupal 500 internal error

기본 조직은 이 기술 조직이 염색되는 것과 같은 방식으로 마모될 가능성이 가장 높습니다(예: 마우스에서 마우스로):

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시도 다른 특정 종과 교배된 주요 제품을 사용합니다. 그렇지 않은 경우 위의 혈청을 부산물로 내인성 IgG의 일부를 차단하십시오. 조직을 정화하기 위해 1% 도롱뇽을 사용하는 동안 섹션을 배양할 수도 있습니다. 또는 PBS-Tween 10세 여성 대신 TBS-Tween 20을 세척 버퍼로 사용하십시오.