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Wenn Sie einen Biorad-Fehlercode von der sds-Fehlerbehebungsseite erhalten, ist dieses Benutzerhandbuch hier, um Sie zu unterrichten.

Aktualisiert

1. ASR Pro herunterladen

2. Führen Sie das Programm aus

3. Klicken Sie auf "Jetzt scannen", um alle Viren auf Ihrem Computer zu finden und zu entfernen

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Problem Grund Lösung Verstreut zusätzlich breite Streifen Minderwertiges oder teilweise Bisacrylamidacrylamid, Polymerisation Elektrophorese-Reagenzien verwenden

Polymerisationsbeschwerden prüfen

Altes SDB oder Musterpuffer Neue Lösungen vorbereiten Heizbereich zu hoch durch Frost Externe Kühlung oder Verzögerung verwenden

zur Laufzeit “Lächeln”-Streifen auf diesem Hautgel, das Streifenmuster krümmt sich auf beiden Geltypen nach oben Übermäßiges Erhitzen in Richtung des Gels; das mit der Residenz verbundene Gel erwärmt sich mehr als jedes Ende Überprüfen Sie die Zusammensetzung der Barriere; Puffer nicht gut zusammengestellt oder Verstopfung in der Innenkammer zu intensiv

Bereiten Sie frischen Puffer vor, um eine perfekte Einarbeitung zu gewährleisten, insbesondere das Ausgangsmaterial 5- bis 10-fach verdünnen

Übermäßige Bedingungen, die auf den Dienst verweisen Überschreiten Sie niemals die empfohlenen Betriebszeiten. Reduzieren Sie das aktuelle Klima von 200 V auf wirklich 150 V oder füllen Sie die Außenkammer i cm unter der Oberkante der glatten englischen Platte Nicht genug Bufera Externe Füllungen und Pufferkammern für vollständig korrekten Verschluss Smiley und sogar Stirnrunzeln an den Gelgrenzen Überladene Proteine ​​ Viel weniger Protein laden Probleme bei der Proben- / Schildvorbereitung Minimierung von Salzen, Detergenzien und Lösungsmitteln in Verbindung mit Probenvorbereitung und Probenpuffer Schlechte Arbeitsbedingungen Verwenden Sie die tatsächliche Spannung Asymmetrische oder verzerrte Streifen, breiter Streifen Überschüssiges Meersalz in Proben Entfernen Sie Salze aus dem Stück durch Dialyse oder entsalzen Sie die Säule, bevor Sie die Probe aufnehmen Probe mit besserer Ionenstärke als Gel Verwenden Sie den gleichen Strukturfluss wie im Gel Unzureichendes Wiederholungshindernis oder falsch geschriebener Text Pufferzusammensetzung prüfen, dann Verdünnungsanweisungen Übertragung vor dem Einschalten Verkürzen Sie die Zeit zwischen der Beispielanwendung und dem Start Streaming während der Migration mit Stapelgel Erhöhen Sie %T beim Auftragen des Gels auf 4,5–5 % T

Erhöhen Sie den Strom beim Auflegen und um 25 %

Ungleichmäßige Gelentwicklung Aushärtungsgeschwindigkeit reduzieren

Gele vorsichtig auftragen

Nach dem Entfernen der Bürste die Wasserbohrungen ausspülen, bis kein Acrylamid mehr zurückbleibt

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MADHA-Dokumente

TEST

Hochleistungs-Zweite Gelelektrophorese mit Narrow pH ReadyStrip IPG, Rev. C

Trennung und Vergleich von Proteinen virulenter und nicht-virulenter Stämme dieses Fischpathogens Flavobacterium Psyrophilum mittels zweidimensionaler Elektrophorese

Verwendung bestimmter PROTEAN Plus Dodeca-Zellen für die zweite Dimension SDS-PAGE, Rev. A

Strategie zur Fokussierung der Wirkung der Leitfähigkeit auf die isoelektrische Fokussierung in immobilisierten pH-Gradienten, Rev. A

Kombination von zweidimensionaler gel-e-Elektrophorese und Flüssigelektrophorese als proteomische Instrumente mit Neurobiologie, Rev. A

Flamingo-Fluoreszenz-Gelfarbstoffempfindlichkeit mit Protein-Protein-Konsistenz gegenüber anderen fluoreszierenden Farbstoffen (Poster), Rev. A

zweidimensionale Elektrophorese Broschüre: Instrumente für die schnelle, hochauflösende Proteintrennung, Ed. B

Broschüre zur Probenvorbereitung: Instrumente zur Extraktion, Reinigung, Fraktionierung und Abreicherung von Proteinproben, z. B

Broschüre zu Bildgebung und Analyse: Tools zum Sammeln und Analysieren von Proteinexpressionsdaten, hrsg. B

Zahl	Beschreibung	Optionen
6222	IPG-Ausgleich für die zweite Berechnung, Platzierung und Einbeziehung von Agarose in die IPG-Auswahl	Zum Herunterladen klicken
6236	Verwendung von Standard Precison Plus Protein Caps	Zum Herunterladen klicken

 

 

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